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miércoles, 24 de abril de 2013
CAUSA
La infección por esta
bacteria puede ser por motivos diversos:
·
Heces-boca.
Si después de defecar no se lava uno las manos. Es la causa de infección más
frecuente
·
Por
agua contaminada.
·
El
contacto con animales.
La bacteria ha sido aislada de las heces, de la saliva y de la placa dental de los pacientes infectados, lo cual sugiere una ruta gastro-oral o fecal-oral
como posible vía de transmisión. Otros medios de infección son ingerir agua y
alimentos contaminados o incluso el traspase de fluidos de forma oral con una
persona contaminada.
QUE ES HELICOBACTER PYLORI
Es una bacteria que infecta el epitelio gástrico humano. Muchas úlceras y algunos tipos de gastritis se deben a infecciones por H.
pylori. En muchos casos, los sujetos infectados nunca llegan a desarrollar
ningún tipo de síntoma. Esta bacteria vive exclusivamente en el estómago
humano, siendo el único organismo conocido que puede subsistir en un ambiente
tan extremadamente ácido. Es una bacteria espiral (de esta característica morfológica
deriva el nombre de la Helicobacter)
y puede «atornillarse» literalmente por sí misma para colonizar el epitelio
estomacal.
MORFOLOGIA
Es una bacteria gram negativa, microaerofílica, espiroidea,
que coloniza primariamente la mucosa gástrica antral, en uno de sus polos posee
multiples flagelos grandes, lo cual produce una inflamación aguda y crónica
denominada gastritis crónica activa, la infección se ha asociado a la úlcera
peptica, adenocarcinoma y linfoma gástrico.
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PATOLOGIA
El H. pylori puede colonizar únicamente el epitelio gástrico, y descansa
sobre las células epiteliales, bajo la capa de moco adherente. La forma espiral
y su motilidad por sus múltiples flagelos posiblemente la ayuden a distribuirse
sobre la mucosa gástrica.
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DIAGNOSTICO
DIAGNÓSTICO DE
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En la mayoría de los casos, los procesos ulcerosos tienen una clínica que le es particular, con períodos de epigastralgia, ardor, dispepsia, entre otros, pero, en otras circunstancias, la enfermedad debuta con su complicación más frecuente, la hemorragia digestiva.
Ulcera duodenal
· Es más
frecuente que la úlcera gástrica.
· Se observa
entre los 35 y los 55 años.
· Factor
nervioso: personas inestables, depresivos, competitivos, ansiosos, irritables.
· Deben tenerse
en cuenta los trastornos endócrinos: Síndrome de Zollingher-Ellison,
Hiperparatiroidismo, Síndrome de adenomas endócrinos múltiples.
Síntomas: dolor epigástrico precedido por ardor o
acidez, tiene periodicidad y ritmo, con la característica de que aparece el
dolor por la madrugada y calma con la ingestión de alimentos o soluciones
alcalinas, reaparece al mediodía antes de la comida denominándose hambre
dolorosa (dolor a tres tiempos); vómitos y náuseas; hematemesis o melena (en
realidad la hemorragia digestiva es más una complicación).
Ulcera gástrica
· Es menos
frecuente que la úlcera duodenal.
· Es más
frecuente en el sexo masculino.
· Aparece entre
los 35 y los 64 años.
Síntomas: dolor epigástrico que tiene periodicidad y
horario, es el llamado dolor a cuatro tiempos, aparece después de las comidas,
suele ceder espontáneamente antes de una nueva ingestión de alimentos; pirosis;
vómitos pituitosos o alimentarios.
Hemorragia digestiva alta
Se puede
presentar con hematemesis, hematoquesia, melena, hipotensión arterial, sangre
oculta en materia fecal.
El paciente
puede estar:
· inestable hemodinámicamente, con
sangrado activo.
· estable hemodinámicamente, con
sangrado activo.
· estable hemodinámicamente, sin
evidencia de sangrado activo.
Cáncer
gástrico
El
cáncer gástrico temprano prácticamente es asintomático. En el cáncer gástrico
avanzado, predominan la pérdida de peso y el dolor abdominal, también existen
la disfagia, saciedad temprana, vómitos persistentes y anemia por los
eventuales sangrados.
Diagnóstico:
Exámenes no invasivos:
1. Serología:
la
resolución espontánea de la infección por HP parece ser un evento muy
infrecuente. Mediante ELISA se detectan IgG o IgA dirigidas contra varios
antígenos específicos del HP. La sensibilidad y especificidad superan el 90% y
la erradicación del HP se asocia a una lenta pero progresiva caída en los
títulos, de modo que la mayoría de las pruebas serán negativas seis meses o un
año después de una erradicación efectiva. La reinfección se asocia a una nueva
elevación de los títulos.
2. Pruebas
en aire espirado (Breath Test):
utilizando C no
radiactivo o C, que puede ser leído en un contador de centelleo, se detecta la descomposición,
por la ureasa del HP, de la urea marcada ingerida por el paciente. La
sensibilidad y la especificidad son comparables a la serología, con la ventaja
de poder confirmar la erradicación cuatro semanas después de terminada la
terapia, sin necesidad de repetir la endoscopía.
Exámenes invasivos:
1. Prueba
de ureasa en biopsia astral:
constituye el método más rápido y
práctico para detectar el HP en pacientes sometidos a endoscopía. La ureasa
producida por el HP convierte la urea a amonio y CO2, lo que
modifica el pH del medio y provoca el cambio de color que define la reacción
como positiva. Su sensibilidad y especificidad son comparables a las de los
métodos anteriores. Un problema adicional lo constituye la posibilidad de
falsos positivos debido a pinzas de biopsia o endoscopios contaminados.
2. Histopatología:
constituye el goldstandard para definir la presencia o ausencia de HP,
tiñendo la muestra con Giemsa . Debe tomarse la muestra en mucosa antral sana,
evitando la región prepilórica y la parte más baja de la curva menor. Es de
utilidad en el diagnóstico inicial.
3. Cultivo:
actualmente no tiene un papel importante en el diagnóstico, debido a su
lentitud y a que en muchos laboratorios su sensibilidad es menor que la de la
histología, aunque es útil en pacientes en los que el tratamiento no ha logrado
erradicación, para evaluar la sensibilidad a los-antimicrobianos-y-orientar-la-terapia-posterior.
4. Reacción en cadena de la polimerasa:
por su sensibilidad y especificidad podría transformarse en el método estándar
futuro, aunque la ubicuidad de HP puede generar problemas por falsos positivos.
La posibilidad de estudiar diversos tipos de muestras, incluyendo tejido fijado
en parafina, le abre importantes perspectivas en estudios retrospectivos y
prospectivos.
5. Helico
Blot 2.1 Kit:
es un test serológico cualitativo usado para detectar
anticuerpos de tipo IgG para antígenos específicos del HP.
TRATAMIENTO
•
Omeprazol 40 mg diarios + Claritromicina
500
mg tres veces por día por 2 semanas, 12 Revista de Posgrado de la VIa Cátedra
de Medicina - N° 158 – Junio 2006
luego
Omeprazol 20 mg diarios por 2 semanas
•
Omeprazol 40 mg diarios + Claritromicina
500
mg tres veces por día por 2 semanas +
amooxicilina
1 g 2 veces por dia por 10 dias
•
Lansoprazol 30 mg 2 veces por dia + Claritromicina 500 mg 2 veces por dia +
amoxicilina 1 g 2 veces por dia por 10 dias
•
Lansoprazol 30 mg 2 veces por dia +
amoxicilina
1 g 3 veces por dia por 2 semanas *
•
Esomeprazol 40 mg diarios + Claritomicina
500
mg 2 veces por dia + amoxicilina 1 g 2
veces
por dia por 10 dias
•
Ranitidina Citrato de Bismuto 400 mg 2 veces por dia + Claritromicina 500 mg 3
veces
por
dia por 2 semanas, luego Ranitidina Citrato de Bismuto 400 mg 2 veces por dia
por
2
semanas
•
Ranitidina Citrato de Bismuto 400 mg 2 veces por dia + Claritromicina 500 mg 2
veces
por
dia por 2 semanas, luego Ranitidina Citrato de Bismuto 400 mg 2 veces por dia
por
2
semanas
•
Subsalicilato de Bismuto 525 mg 4 veces
por
dia + Metronidazol 250 mg 4 veces por
dia +
Tetraciclina 500 mg 4 veces por dia **
por 2
semanas + Antagonistas H2 por 4
semanas
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TOMA DE MUESTRAS
En este análisis, la muestra de
materia fecal (heces) se utiliza para determinar si hay antígenos H. Pylori en el sistema gastrointestinal del niño
Detectando anticuerpos específicos en una muestra de
sangre del paciente o de heces, utilizando antígenos.
También se utiliza la prueba del aliento con urea,
en la cual el paciente bebe urea marcada con 14C o 13C muestras de heces fecales.
TINCION DE BAAR
Tinción de Ziehl Neelsen
La tinción
de Ziehl-Neelsen(BAAR) es una técnica de tinción
diferencialrápida y económica, para la identificación de microorganismos
patógenos, por ejemplo M. tuberculosis .Fue descrita por primera
vez por dos médicos alemanes, Franz Ziehl (1859 a1926), un bacteriólogo y
Friedrich Neelsen (1854 to 1894), un patólogo.
1.-
Fundamento
Este
método se basa en que las paredes celulares de ciertos parásitos
ybacterias contienen ácido graso|ácidos grasos (por ejemplo, el ácido
micólico)de cadena larga (50 a 90 átomos de carbono) que
les confieren la propiedad deresistir la decoloración con alcohol-ácido,
después de la tinción con colorantesbásicos. Por esto se denominan
ácido-alcohol resistencia|bacilos ácido-alcoholresistentes o BAAR. Las
Mycobacterium|micobacterias como
Mycobacteriumtuberculosis|M.
tuberculosis y Mycobacterium marinum|M. marinum y losparásitos coco
(bacteria)|coccídeos como Cryptosporidium se caracterizan por sus propiedades
de ácido-alcohol resistencia. La coloración clásica de Ziehl-Neelsen requiere
calentamiento para que el colorante atraviese la paredbacteriana que contiene
ceras.
2.-
Técnica
Esta
técnica puede realizarse tanto en muestras histológicas como citológicas.
2.1
- Variante histológica
Para
demostrar la presencia de BAAR en cortes de tejido en parafina. Losreactivos
necesarios para su realización son los siguientes:
Ø Ácido periódico 5%
Ø Carbol fucsina de Ziehl
(fucsina fenicada). Preparar mezclando en elorden dado:
a) a)0,5
g fucsina básica
b) b)50
cc agua destilada
c) c)5
cc etanol absoluto
d)
d)2,5 g cristales de fenol derretidos
Ø Hematoxilina
a)
Alcohol
ácido 1%:
b) Alcohol de 70º
·
Ácido
clorhídricoEl procedimiento es el siguiente:
·
Desparafinar
e hidratar los cortes
·
Ácido
periódico 5%, 10 min
·
Lavar
con agua destilada
·
Fucsina
fenicada, 15 min
·
Decolorar
en alcohol ácido al 1%
·
Lavar
con agua destilada
·
Hematoxilina,
10 min
·
Azulidificar
con, por ejemplo, carbonato de litio
·
Deshidratar,
aclarar y montar preparaciones
cultivos
Cultivo
H. pylori crece en
medios de cultivo artificiales con suplemento de sangre o derivados, después de
3 a 5 días
de incubación en atmósfera microaerofílica y a 35ºC .
Contaminación de las placas de cultivo con diferentes microorganismos
Cuando se realiza la siembra de una biopsia
gástrica es recomendable la utilización de medios selectivos que contengan
antibióticos. En la imagen se puede observar una placa de cultivo no selectiva
en la que el crecimiento masivo de diferentes microorganismos impide el
crecimiento de H. pylori.
Método de dilución en agar
En el método de dilución en agar se incluye el
antibiótico diluido en el medio de cultivo. En cada placa se puede colocar de 25 a 45 gotas de la suspensión
bacteriana y se puede hacer con diferentes cepas, utilizando un replicador de
Steer. En la imagen se puede observar una placa en la que cada uno de los botones
corresponde a una cepa inoculada de Helicobacter pylori.
TINCION
 |
Foto
13.- Hematoxilina-eosina, 40X. Zonas de actividad, neutrófilos en la lámina
propia y en las células epiteliales de las glándulas gástricas.
|
 |
 |
Foto
15.- Tinción de Genta, 100X, inmersión en aceite. Numerosos bacilos de
Helicobacter pylori en el moco del epitelio de superficie, se tiñen de color
negro.
|
pruebas bioquimicas
PRUEBAS BIOQUÍMICAS
PRUEBAS
|
H. PILORY
|
Catalasa
|
+
|
Oxidasa
|
+
|
NO3-NO2
|
+
|
Movilidad
|
+
|
H2S (TSI)
|
-
|
Hidrólisis del hipurato
|
-
|
Ureasa
|
-
|
Cefalotina acida
|
S
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Acido Nalidixico
|
R
|
DNasa
|
+
|
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